低 DNA qPCR 混合液

Low DNA qPCR 混合液是一种快速、重现性高的实时 PCR 母液,采用高度优化的缓冲液化学成分和化学热启动 DNA 聚合酶设计,可提供出色的结果和极低的背景,从而提高灵敏度。

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Meridian 的低 DNA qPCR 混合液

快速循环条件下的灵敏度

使用 Low DNA qPCR 混合液(红色)和另一家供应商的化学热启动 qPCR 混合液(黑色),在快速循环条件下(10 分钟 95°C,然后 40 个循环 95°C 10 秒,60°C 10 秒),对 100 倍稀释的人类 cDNA 进行多重检测。结果表明,在快速循环条件下,Low DNA qPCR mix 比其他供应商的化学热启动 qPCR mix 更灵敏。

说明

Low DNA qPCR 母液包含化学热启动 Taq 聚合酶和高度优化的反应缓冲液,其中含有 dNTPs、MgCl2、稳定剂和 PCR 增强剂。Taq 聚合酶在加入化学热启动前后经过两次纯化,这有助于去除 DNA 聚合酶生产过程中产生的微量 DNA(称为生物负载)。此外,抗体热启动不会产生生物负载,因此非常适合低拷贝数目标以及微生物 DNA 和真菌 DNA 检测试验。

低 DNA qPCR 母液还可用于快速、精确和高重复性的序列变异基因分型,包括基因位点,提供更严格和更特异的等位基因特异性探针结合,更广泛和更清晰地分离等位基因群。

规格

说明结合了缓冲液化学和 PCR 增强剂聚合酶、dNTPs 和 MgCl2 的最新进展。低 DNA 背景和严格的热启动特性是低拷贝细菌目标 qPCR 的理想选择,可避免细菌或真菌目标的假阳性扩增。
浓度2x
外观无色透明溶液
应用基于探针的实时 PCR、两步 RT-qPCR
样品类型cDNA, DNA
演示文稿1 瓶
存储-20 °C
混合稳定性见外标签
一致性测试样本和参照样本之间的 ±0.5 Ct 差异
DNA 污染在大肠杆菌和小鼠基因组 DNA 特异性目标的 PCR 扩增中未检测到与阴性对照重叠的痕迹。
DNase 污染检测不到降解

目录和手册

分子诊断试剂解决方案
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细菌和真菌 DNA 扩增
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常见问题:低 DNA qPCR 混合液

化学热启动 DNA 聚合酶有哪些优势和注意事项?

使用化学热启动 DNA 聚合酶时,聚合酶与化学基团共价连接,以阻止酶在室温下的活性。
优点
– 比抗体热启动方法更严格,因此即使在室温下长时间也不会有活性,最大限度地减少了非特异性扩增
– 生物负荷低,因为它不含动物和细菌源成分
考虑因素
– 聚合酶完全活跃所需的激活时间较长

目前已开发出许多基于荧光 qPCR 引物和探针的化学试剂,不同的商业供应商也可提供这些试剂用于分子诊断检测,其中最常用的两种试剂是:
– 水解(TaqMan)探针。使用水解探针的主要优点是特异性高、信噪比高,并能进行多重 qPCR 反应。缺点是探针的初始成本较高。
– 分子信标。分子信标具有高度特异性,可用于多重扩增,如果目标序列与信标序列不完全匹配,则不会发生杂交和荧光。与水解探针不同,分子信标在扩增过程中会发生位移,但不会被破坏,必要时可用于熔融曲线分析。分子信标的主要缺点是设计困难,需要有足够强的稳定发夹茎,使分子不会自发折叠成非发夹构象,但又不能太强,否则可能无法与目标物正确杂交。

低 DNA qPCR 混合液具有一定的抑制剂耐受性,但对于从粗裂解液或抑制剂丰富的样品中进行扩增,我们有通用的抑制剂耐受性 qPCR 混合液,而对于更高的灵敏度,我们有特定样品(血液、唾液、尿液、粪便和植物)混合液。

基因分型是指确定群体中个体间遗传变异的过程。单核苷酸多态性(SNP)是最常见的遗传变异类型,是特定基因座上的单碱基差异。这些基因型变化可带来积极或消极的表型结果,如植物更强的抗逆性或人类对疾病的易感性。因此,SNP 通常是了解生物体生物学特性的有用标记。基因分型使用两个等位基因特异性探针,探针上有一个碱基错配,SNP 的两端各有一对引物。根据 SNP 位置上出现的碱基,探针在 qPCR 过程中要么不能正确杂交而保持完整,要么正确杂交而被裂解产生信号。由于双标记探针检测是以 PCR 为基础的,因此实施起来相对简单,而且可以通过同时进行多个反应来大幅扩大规模。

基因分型还指拷贝数变异(CNV),这是由于不同基因组中 DNA 片段的拷贝数不同造成的。拷贝数变异是指编码基因的拷贝数变异,可导致对疾病的易感性或抵抗力。这种方法使用两套引物和探针,一套用于没有变化的校准基因,另一套用于被认为拷贝数发生变化的基因。通过比较两种基因的 Ct 值,可以确定拷贝数是否发生了变化以及变化的程度。

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